生物技术

DNA/RNA

一些电泳相关

• 众所周知的southern对应DNA northern对应RNA
• 核酸探针杂交之前要预杂交（一般用鲑鱼精子???）
• 硝酸纤维素膜和尼龙膜：前者靠疏水作用结合核酸 比较脆；后者靠共价键结合核酸 比较坚韧（所以多轮杂交一般用尼龙膜）

PCR（及其衍生操作）

• T4DNA聚合酶在低dNTP浓度下表现3'-5'外切酶活性 高浓度下表现聚合酶活性 应用于3'末端标记 同时klenow片段也可应用于3'末端标记；5'末端标记用碱性磷酸酶和T4多核苷酸激酶
  • 末端标记法一般较少用于杂交探针制备（但可以用）早期DNA测序会使用末端标记 现在多用于测序

• 引物设计原则（老生常谈系列）
  • 长度18－30
  • 避免二聚体/二级结构（电泳胶底下一大坨二聚体预警）
  • 碱基最好随机分布 同种碱基不要成串出现 GC比例40％－60％
  • Tm在55－80
  • 3'端最好以G/C结尾 两条引物3'端绝对不能互补（二聚体预警）避免多个A/T
  • 5'端可以灵活修饰 影响没有那么大
  • 对真核生物mRNA可设计跨内含子引物防止非特异性扩增
• 甘油和DMSO可以竞争核酸内部的氢键 进而打开二级结构 提高产量
• RT－PCR的ct法要看本底基因 本底是内参基因！！要用本底基因的Δct进行矫正算ΔΔct 具体计算公式是ΔΔct＝Δct实验－Δct对照 用于排除RNA提取效率 反转录效率和你每个管加的cDNA量有轻微不一样的误差

一些奇怪的PCR

巢式PCR

两对引物 第一轮扩增后要对产物进行稀释 避免外引物产生干扰 可以极大提高反应的特异性

5'/3'RACE

适用于RNA一端已知一端未知

先利用反转录酶得到一段DNA 接着给它加上一个尾巴 然后利用已知片段和尾巴进行PCR

用两对引物增强特异性

提取

DNA

酚－氯仿抽提

SDS和蛋白酶K裂解细胞并降解蛋白质 加入苯酚/氯仿/异戊醇混合物后离心 分为三层

上层（水相）：DNA＆RNA

中层（白色的一坨）：变性的蛋白质

下层（有机相）：细胞碎片＆脂质

将水相转移并加入乙醇/异丙醇 DNA会形成白色絮状沉淀

酚用于变形并抽提DNA白纸 氯仿增强去蛋白效果并抽提氯仿 同时促进相分离

注：这个方法里涉及到异戊醇和异丙醇两个长得挺像的东西 前者用作消泡剂 后者用来沉淀DNA

柱层析法

高盐条件下裂解细胞并上柱 DNA带负点的磷酸骨架会通过盐桥（也有说疏水作用？）吸附在硅胶膜上 用乙醇缓冲液洗去杂质 再用TE缓冲液/水洗脱 得到DNA

碱裂解法

试剂一：Tris－HCl和葡萄糖（也可以是水 有时会有EDTA和RNaseI）重悬菌体

试剂二：NaOH和SDS 用来裂解细胞 变性 不能剧烈震荡 会把基因组DNA打碎 导致后续质粒混入基因组DNA

试剂三：KAc＆HAc 缓冲液 使碱性环境变为中性 质粒复性 而较为复杂的基因组DNA来不及复性 形成白色絮状沉淀

不过试剂一里不用特意加RNase 毕竟这玩意哪都有

RNA

TRIzol法

TRIzol试剂含有异硫氰酸胍和苯酚 异硫氰酸胍是变性剂 灭活RNase 苯酚溶解蛋白质 加入氯仿后分层

上层（水相）：RNA

中层（也是白的一坨）：DNA 蛋白质

下层（有机相）：蛋白质 脂质

提取水相加入乙醇/异丙醇 沉淀RNA

和酚－氯仿的区别在于环境pH 酚－氯仿为中性环境 此时DNA结构稳定且可溶 倾向于留在水相里；而TRIzol法环境为较强的酸性 DNA亲水性下降并发生酸变性 碱基暴露 疏水性增强（一个小小的知识点：嘌呤碱对酸更敏感）

柱层析法

和DNA柱层析法类似 裂解液里会加入异硫氰酸胍或DEPC抑制RNase的活性 通常还会在柱上加上DNase

测序

• sanger法等多种末端终止法电泳的时候用（SDS－）PAGE胶电泳 琼脂糖孔洞太大了分辨率不够
• 一代末端终止 二代边合成边测序 三代单分子合成测序
  • 准确率上1＞2＞3
  • 读长3＞1＞2
  • 效率3＞2＞1
  • 现在最常用的是二代
• 某些非光学显微镜（比如扫描隧道显微镜）可以直接“阅读”DNA

检测

• 280吸光

蛋白质（氨基酸）

一些电泳相关

• 如果是免疫法的话直接考马斯亮蓝染胶 不用blot转膜
• PAGE胶的制备：化学催化剂AP由TEMED催化产生硫酸自由基 激活Acr（丙烯酰胺）形成长链 由Bis（甲叉双丙烯酰胺）交联形成凝胶；光催化剂核黄素在TEMED和光照条件下还原再被氧化形成自由基进而聚合
  • 化学聚合的启动需要TEMED推动 光聚合不需要（光聚合法中没有TEMED也能凝固 不过会比较慢）
  • 光催化一开始需要氧气 聚合过程中氧气必须隔绝 因为氧分子会阻止碳链的延长和聚合
  • Acr和Bis有神经毒性 凝固后毒性基本没有但仍然不建议食用（啊喂）
• 使用SDS时加热可以使其结合更加充分 可以使蛋白质转变成线性棒状结构
• PG－PAGE：梯度聚丙烯酰胺凝胶电泳 越往下孔径越小
• 火箭电泳（单向径向免疫扩散电泳）：在制胶的时候加入一定浓度梯度的抗体 胶凝固后打孔 在孔里加入抗原沉淀 抗原抗体只有在恰当的浓度下才能形成沉淀 抗原过多或抗体过多都比较可溶 所以只有前段有沉淀线
  • 可以用于检测特定抗原的含量 抗原浓度越高 沉淀峰也越高

测序

• Sanger法：2'4'二硝基氟苯和蛋白质α－氨基反应然后用酸水解（一般肽链会被完全水解）得到DNP－氨基酸 黄色 也可以和别的氨基反应 不一定测出的是N端蛋白质 反应条件弱碱性
• Edman法：PITC在碱性条件下和α－氨基反应得到PTC－肽链 在无水强酸中被切割下来得到PTH－氨基酸和新的肽链 可以自动化 有读长限制 反应条件弱碱性

检测（和一些特异反应）

• 260吸光
• ELISA
  • 直接法：抗原吸附在固相载体上 仅使用酶标一抗 优点是方便快速 交叉反应性低；缺点是成本高 信号不够强 灵敏度差
  • 间接法：抗原吸附在固相载体上 加入含有待测一抗的样本 洗板后加酶标二抗 用来检测抗体 优点是高灵敏度和高灵活度；缺点是有非特异性结合的风险 比直接法麻烦
  • 夹心法：抗体吸附在板上 加待测样本 加检测抗体 形成抗体－抗原－抗体的三明治结构 洗板 加酶标二抗 洗板 加显色底物
    • 分为直接和间接法 直接法不用加酶标二抗
    • 优点是灵敏度高特异性高 适用于复杂样本；缺点是对抗体要求高
  • 竞争法：分参考臂和检测臂 把抗原包被在孔板上 加待测样本（含有未知浓度的游离抗原）和固定量的酶标抗体 抗原浓度高则信号弱 抗原浓度低则信号强
• 考马斯 R250更灵敏 比G250多两个甲基 G250更常用 定量用G250 抗干扰性好 灵敏度高 会被去垢剂干扰 受蛋白质种类影响大
• 凯氏定氮法 一堆奇妙的试剂得到氨然后滴定 结果×8 三氯氰胺.jpg
• 双缩脲：肽键在碱性环境下和Cu^2＋离子结合形成紫色络合物 可以定量检测 灵敏度较低
• BCA：在碱性环境下肽键把Cu^2＋还原成Cu^＋ Cu^＋再和BCA反应生成紫色络合物 562nm最大吸光 复合物稳定 灵敏度高 会被强还原剂干扰 受蛋白质种类影响大
  • 我知道这很怪 但是 这个反应实际上是肽键旁边的α－碳院子发生一次去质子化－电子转移－得到质子的过程 其结果可以看作生成了一个烯醇式结构作为中间过渡态 真正的电子供体是α－碳上那个氢原子
• lowry：双缩脲plus版 先双缩脲再加folin－酚 产生深蓝色物质 比双缩脲灵敏但繁琐耗时长 易被干扰
• 荧光法：不常考 顾名思义用荧光染料染 灵敏度/特异性高 成本高 需要标准曲线
• 茚三酮：和α－氨基反应 蛋白质的游离氨基不支持产生明显实验结果 用来检测氨基酸 其他氨基酸为紫色 脯氨酸为黄色
• ellman反应：（别和edman搞混）二硝基苯甲酸 弱碱条件下和巯基反应 产物412nm有吸光 拿来判断游离巯基含量
• 黄色反应：芳香族和浓硝酸反应变黄 再加浓碱液变橙黄
• 坂口反应：精氨酸特异性反应 α－萘酚和次氯酸钠反应产生红色产物